Sonia Néron, Ph. D.
Scientifique, production cellulaire Professeure associée au Département de biochimie et microbiologie de l'Université Laval Tél. : 418 780-4362, poste 3260 |
Intérêts de recherche :
- Culture de cellules primaires humaines provenant du sang d’adultes en santé. Utilisation des lymphocytes et cellules souches dans le développement de thérapies cellulaires.
- Applications de la cytométrie en flux dans les opérations de la banque de sang de cordon et le contrôle de la qualité des cellules produites ex vivo.
Projets d'étudiants en cours :
- Étude sur la culture in vitro de cellules primaires humaines : rôle du potentiel REDOX et de l’environnement en conditions d’hypoxie. Un aspect de ces travaux propose la génération ex vivo des plasmocytes autologues pour utilisation thérapeutique chez les patients ayant subi une allogreffe.
- Application de la cytométrie en flux et analyses multiparamétriques des cellules du sang d’individus en santé et de patients atteints de maladies autoimmunes.
Mandat de mon équipe :
Les travaux de mon équipe portent en premier lieu sur l’amélioration des procédés et méthodes touchant les cellules souches. Ces améliorations visent à combler des besoins de clients internes, en particulier le Laboratoire de cellules souches et de référence ainsi que le Laboratoire de contrôle de la qualité. Nous sommes principalement impliqués dans toutes les étapes qui font appel à l’établissement de nouvelles méthodes de cytométrie en flux et participons à l’amélioration touchant certaines procédures existantes. De plus, dans le cadre des travaux de la Direction de la production cellulaire, nous travaillons à la mise au point de méthodes pouvant servir de critères de qualité des produits cellulaires.
Dans le cadre de ces travaux, notre équipe utilise les cellules mononucléées du sang obtenues d’individus en santé afin d’établir et développer de nouvelles applications et de tester des modèles de culture cellulaire. Ces travaux portent entre autres sur la modulation ex vivo du microenvironnement des cellules souches afin d’augmenter le nombre de cellules multipotentes et/ou de les pousser à se différencier en cellules progénitrices. Nous évaluons le potentiel des cellules souches du sang d’adulte comme nouvelle source de cellules souches destinées à la transplantation. Ces cellules purifiées sont soumises à un environnement contrôlé en apport des nutriments, conséquent à la sélection de milieux de culture définis exempts de protéines animales. Nous étudions aussi l’impact d’un environnement hypoxique sur l’expansion et la différenciation cellulaires. Tous ces modèles cellulaires servent à développer des applications de cytométrie multiparamétrique afin de contribuer au contrôle de la qualité des cellules générées ex vivo et d’améliorer les opérations de la banque de cellules souches.
Expertise :
- Culture cellulaire :
- Cellules du sang, lymphocytes, cellules souches et lignées cellulaires
- Expansion et différenciation in vitro et ex vivo :
- Modulation du microenvironnement
- Formulation des milieux de culture
- Préparation d’anticorps monoclonaux
- Réponse immunitaire et méthodes immunochimiques
- Applications de cytométrie en flux
Publications récentes :
- Jobin C, Cloutier M, Simard C, Néron S. (2015). Heterogeneity of in vitro cultured CD34+ cells isolated from peripheral blood. Cytotherapy (Cytotherapy) 17 (10): 1472-1484.
- Itoua-Maïga R, Bonnaure G, Tremblay-Rochette J, Néron S. (2014). Human CD38hiCD138+ plasma cells can be generated in vitro from CD40-activated switched-memory B lymphocytes. J Immunol Res (Journal of Immunology Research): 635108.
- Dugas-Bourdages E, Néron S, Roy A, Darveau A, Delage R. (2014). Persistent polyclonal B-cell lymphocytosis B cells can be activated through CD40-CD154 interaction. Adv Hematol (Advances in Hematology): 854124.
- Simard C, Cloutier M, Néron S. (2014). Rapid determination of IL-6 specific activity by flow cytometry. J Immunol Methods (Journal of Immunological Methods) 415: 63-65
- Néron S, Roy A, Dussault N, Philippeau C. (2014). Anti-thyroglobulin IgG in therapeutic immunoglobulins: A reactivity bias in IgG4 subclass. Open J Immunol (Open Journal of Immunology) 4 (3): 68-75.
- Bonnaure G, Néron S. (2014). N-acetyl cysteine regulates the phosphorylation of JAK proteins following CD40-activation of human memory B cells. Mol Immunol (Molecular Immunology) 62 (1): 209-218.
- Itoua Maïga R, Lemieux J, Roy A, Simard C, Néron S. (2014). Flow cytometry assessment of in vitro generated CD138+ human plasma cells. Biomed Res Int (BioMed Research International). DOI: 10.1155/2014/536482.
- Simard C, Néron S. (2014). Feasibility study: Phospho-specific flow cytometry enabling rapid functional analysis of bone marrow samples from patients with multiple myeloma. Cytometry B Clin Cytom (Cytometry. Part B. Clinical Cytometry) 86 (2): 139-144.
- Ritamo I, Cloutier M, Valmu L, Néron S,Räbinä J. (2014). Comparison of the glycosylation of in vitro generated polyclonal human IgG and therapeutic immunoglobulins. Mol Immunol (Molecular Immunology) 57 (2): 255-262.
- Néron S, Roy A, Dumont N. (2012). Large-scale in vitro expansion of polyclonal human switched-memory B lymphocytes. PLoS One (PLoS One) 7 (12): e51946.
- Néron S, Roy, A. (2012). Overview of IgG-reactivity in therapeutic immunoglobulins revealed by protein array analysis.Biochemistry & Analytical Biochemistry (Biochemistry & Analytical Biochemistry) S8: 001.
- Nadeau PJ, Roy A, Gervais St-Amour C, Marcotte MÈ, Dussault N, Néron S. (2012). Modulation of CD40-activated B lymphocytes by N-acetylcysteine involves decreased phosphorylation of STAT3. Mol Immunol (Molecular Immunology) 49 (04): 582-592.
- Dussault N, Dumont N, Néron S. (2011). Modulation of human B lymphocyte differentiation by therapeutic immunoglobulins: from protein to mRNA levels. Open Journal of Immunology (Open Journal of Immunology) 1 (03): 65-73.
- Néron S, Côté G, Dumont N, Roy A, Fecteau JF, McNeil MÈ. (2011). Contribution of CD40-activated naïve B lymphocytes in the modulation of CD27+ memory B cell growth and differentiation. Dans : Advances in Medicine and Biology, vol. 25. Bernhardt, LV, éditeur de la collection (Hauppauge, NY, Nova Science Publishers, Inc., 306 p.): 143-167.
- Néron S, Roy A, Dumont N, Dussault N. (2011). Effective in vitro expansion of CD40-activated human B lymphocytes in a defined bovine protein-free medium. J Immunol Methods (Journal of Immunological Methods) 371 (1-2): 61-69
- Néron S, Nadeau PJ, Darveau A, Leblanc JF. (2011). Tuning of CD40–CD154 Interactions in Human B-Lymphocyte Activation: A Broad Array of In Vitro Models for a Complex In Vivo Situation. Arch Immunol Ther Exp (Warsz) (Archivum Immunologiae et Therapiae Experimentalis) 59 (1): 25-40.
- Néron S, Boire G, Dussault N, Racine C, de Brum-Fernandes AJ, Côté S, Jacques A. (2009). CD40-activated B cells from patients with systemic lupus erythematosus can be modulated by therapeutic immunoglobulins in vitro. Arch Immunol Ther Exp (Warsz) 57 (6): 447-458.
- Ducas É, Dussault N, Roy A, Dumont N, Néron S. (2009). Estimation of the number of CD154 molecules in membrane extracts used as a source of CD40 stimulation of human B lymphocytes. J Immunol Methods (Journal of Immunological Methods) 344 (2): 133-137.
- Cayer MP, Proulx M, Ma XZ, Sakac D, Giguère JF, Drouin M, Néron S, Branch DR, Jung D. (2009). c-Src tyrosine kinase co-associates with and phosphorylates signal transducer and activator of transcription 5b which mediates the proliferation of normal human B lymphocytes. Clin Exp Immunol (Clinical & Experimental Immunology) 156 (3): 419-427.
- Fecteau JF, Roy A, Néron S. (2009). Peripheral blood CD27+ IgG+ B cells rapidly proliferate and differentiate into immunoglobulin-secreting cells after exposure to low CD154 interaction. Immunology (Immunology) 128 (1Suppl): e353-e365.